REPLI-g Mini Kit

对微量或者珍贵样本进行高度均一的全基因组扩增
  • 扩增获得10 µg DNA,产量稳定
  • 同时扩增多个基因组位点
  • 使用多重置换扩增反应获得可靠结果
  • 扩增获得的DNA适用于多种下游应用
  • 长期储存不会导致DNA降解

REPLI-g Mini Kit提供优化的试剂,利用多重置换扩增(MDA)技术,对微量或珍贵样本进行高度均一的全基因组扩增(WGA)。50 μl反应体积的常规DNA产量为10 μg,产物的平均长度长于10 kb(在2 kb至100 kb之间)。独特的REPLI-g技术能够从多种类型的微量或珍贵样本中高度均一的进行全基因组扩增,起始样本包括纯化后基因组DNA、新鲜血液或或干血、口腔拭子、新鲜或冷冻组织或细胞。该方法可便利、准确的扩增基因组DNA,得到的DNA可即用于无需标记的多种下游应用,无需进行纯化或定量检测。与基于PCR的全基因组扩增技术相比,这种方法的无错配率提高了1000倍,避免出现假阴性或假阳性结果。

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REPLI g Human Control Kit 25
Human control DNA for 25 x 50 µl whole genome amplification reactions
150090
¥4,800
REPLI-g Mini Kit (25)
DNA Polymerase, Buffers, and Reagents for 25 x 50 µl whole genome amplification reactions (typical yield 10 µg per reaction)
150023
¥30,000
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REPLI-g Mini Kit (100)
DNA Polymerase, Buffers, and Reagents for 100 x 50 µl whole genome amplification reactions (typical yield 10 µg per reaction)
150025
¥92,000
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REPLI-g Mini Kit  は分子生物学実験用です。疾病の診断、治療または予防の目的には使用することはできません。


どのようなタイプのサンプルでも一定したDNA収量|熱およびアルカリによる変性の遺伝子座への影響|長期安定性|精製gDNAあるいはREPLI-g増幅DNAで同等のNGS(次世代シークエンシング)結果|REPLI-g MiniおよびMidi 操作|正確なジェノタイピング|REPLI-g増幅の模式図|Phi29ポリメラーゼでバイアスのない増幅|均一かつ正確な増幅|均一かつ正確な全ゲノム増幅|様々な量のテンプレートから均一なDNA収量|信頼できるSNPジェノタイピング|
ゲノムDNA、ヘパリンおよびEDTA保存全血を含む様々なスタートサンプルをREPLI-g MidiおよびMini Kitで増幅した。40 µg (Midi Kit)および8~10 µg(Mini Kit)の典型的な収量が得られた。|加熱(95℃)あるいはスタンダードのREPLI-g Kitアルカリ溶解プロトコールによりゲノムDNAサンプル(10 ng)を変性した。REPLI-g DNA Polymeraseによる増幅後、2種類の遺伝子座のCT 値をサンプル間で比較した。REPLI-g Kitアルカリ溶解プロトコールを用いて増幅した遺伝子座のCT 値は低く、遺伝子座の増幅が正確に行なわれたことを示し、これらの遺伝子座で配列情報のロスがないことを意味する。|REPLI-gで増幅したDNAサンプルを4種類のフォーマットにて–20℃で表記した時間だけ保存し、リアルタイムPCRを行なった。2種類の遺伝子座、 [A] 遺伝子座Aおよび [B] 遺伝子座 B、に関してサンプルごとにアッセイを行なった。gDNA:REPLI-gで増幅していないゲノムDNA。保存のフォーマット:50 µlのREPLI-g反応液:1) 追加操作なし("50 µl REPLI-g"); 2) 5 µlを溶液から採取("5 µl REPLI-g"); 3) QIAamp Mini Kitで精製("50 µl QIAamp purified REPLI-g");および 4) 50 ng/µlに希釈(50 µl diluted REPLI-g")。|Bacillus subtilis ゲノムの全ゲノムシークエンシングを行なった。分析については、2 μgのゲノムDNAあるいはREPLI-g Midi Kitを使用して105 個の細胞から増幅したDNAを300 bpのフラグメントに切断した。ライブラリー調製のためにそれぞれ1 μgを使用した。 Illumina MiSeq装置を用いてシークエンシングを行なった。[A] gDNA およびREPLI-g増幅DNA両方で同等の塩基配列解析率が観察された。[B] ゲノム遺伝子座配列のアライメント比較では、gDNAに比べてREPLI-g増幅DNAでかなり高い比率の整合があることを示し、WGA(whole genome amplification)後でのジャンクDNAのレベルが最少であることを意味する。非増幅DNAおよびREPLI-g増幅DNAは同程度のエラー率(ミスマッチ、高品質エラー、indels、キメラ)が観察された。
(アライメントの比較はSMALT [Welcome Trust Sanger Institute]を用いて行なった)。|REPLI-g Mini Kitを用いたゲノムDNAの増幅は3つの基本的な操作ステップが必要である。テンプレートDNAの断片化および損傷を避けるため、まずサンプル(精製したゲノムDNA 10 ng、全血0.5 µl、組織培養細胞300個)のマイルドなアルカリ変性を行なう。次にサンプルを中和し、REPLI-g master mix を添加して30℃でインキュベートする。|REPLI-gテクノロジーを用いて20種類のDNAサンプルを増幅した後、DNA精製せずに3種類のSTR遺伝子座(CSF1PO、TPOX、THOI)を用いたジェノタイピング解析を行なった。結果を非増幅ゲノムDNAについて得られたものと比較した。DNAをポリアクリルアミドゲル電気泳動により分離し、銀染色により可視化した。2本のバンドをもつレーンは特定のSTR遺伝子座のヘテロ接合を表す一方、1本のバンドをもつレーンはホモ接合体を表している。|Phi 29 ポリメラーゼがDNAテンプレート上を移動し相補鎖を置換する。置換したDNA鎖が複製のテンプレートになり長鎖DNAが高い収量で複製される。|[A] DNAの二次構造によってはTaqポリメラーゼが合成を中止、テンプレートからスリップ、あるいは解離する。この結果、不正確なDNA増幅、不完全な遺伝子座の配列解析、短いサイズのフラグメントが生じる。[B] REPLI-g KitはPhi29ポリメラーゼを使用し、全ゲノムの正確で均一な増幅を実現する二次構造に置き換わる。|[A] REPLI-g テクノロジー、 [B] DOP-PCR、 [C] PEPにより増幅したDNAを用いて8つの遺伝子座の相対量をリアルタイム定量PCRにより測定した。増幅していない1 μgのコントロールDNAとの比較から遺伝子座の量を換算した(Dean, F.B. et al.(2002).Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.99, 5261.© 2002 National Academy of Sciences, USA.)。|REPLI-gテクノロジーで増幅した44個のサンプルを用いて、47種類のヒト遺伝子座(常染色体ごとに2遺伝子座、X染色体上の2遺伝子座、Y染色体上の1遺伝子座)に関してリアルタイムPCRを行なった。各サンプルは約10,000倍に増幅されたが、遺伝子座間の増幅の偏りは最大でもわずか6倍であった。|様々な量のヒトゲノムDNAを標準的なREPLI-g Midi Kit 反応で増幅し、記載時点で溶液の一部を採取した。 スタートサンプルの量とは無関係に、 50 µlの反応液から約40 µgの増幅DNAが得られた。|REPLI-gテクノロジーで増幅したDNAは精製操作を行なわず、ランダムに選んだ2つの遺伝子座(WIAF-1004およびWIAF-622)のSNPジェノタイピング(TaqMan 解析を使用)に用いた。各アレルが非常に収斂性よくクラスター化するので、ホモおよびヘテロ接合体のジェノタイピングの正確な結果を得ることができる。|
パフォーマンス

从多种样本中得到高产量DNA,可用于多种应用

REPLI-g Mini Kit可用于多种样本,包括基因组DNA、新鲜或干血、新鲜或冰冻组织、细胞。50 μl反应体系的常规DNA产量可以达10 μg(参见"Consistent DNA yields using any sample type")。不同的模板质量均可扩增得到同样的DNA产量(参见"Uniform DNA yield from various amounts of template")。从不同的模板浓度获得一致的DNA产量十分要,对于高通量应用而言尤其如此,在下游的基因分析中不需要纯化或定量。

产物平均长度大于10 kb,在2 kb到100 kb之间,因此能够用于复杂的限制性酶切和长片段PCR等下游应用。REPLI-g扩增的DNA十分适用于基因分型,如使用TagMan引物/探针对的SNP基因分型(参见"Reliable SNP genotyping "),测序和STR/微卫星分析(参见"Accurate genotyping")。

成功应用于二代测序

许多文献已展示了REPLI-g技术扩增的DNA在二代测序中的成功应用,包括肿瘤细胞的外显子组测序、全基因组测序、宏基因组学的研究、以及单细胞分析。对于将全基因组扩增DNA用于二代测序一直有一些争论,因此我们检测了可能影响全基因组扩增DNA在下游应用中表现的影响因素。我们发现:起始材料的质量对二代测序实验有很大影响。如果使用的是低质量DNA(如降解的DNA),或长时间保存的组织材料,用扩增获得的DNA进行二代测序则无法获得可靠结果。但是,对完整细胞或未降解的纯化后DNA使用REPLI-g技术进行全基因组扩增,然后用于二代测序,结果可与纯化的基因组DNA的测序结果相媲美。分析测序结果的各基因组位点和错配率得出结论,全基因组扩增后垃圾DNA水平低,扩增获得的DNA和纯化获得的DNA的错配率基本相同(参见"Comparable NGS (next-generation sequencing) results obtained using purified gDNA or REPLI-g amplified DNA")。

高度可靠的全基因组扩增

REPLI-g技术提供高度均一的全基因组扩增。Phi29聚合酶可复制长达70 kb的DNA,而不会从DNA模板上脱离(参见"Schematic representation of REPLI-g amplification")。与基于PCR的全基因组扩增技术不同,Phi29聚合酶具有3'→5'外切酶校对活性,在复制过程中的高保真性是Taq DNA聚合酶的1000倍。试剂盒中提供的抗外切酶的引物可确保DNA的高产量,优化的全基因组扩增缓冲液体系适用于长片段DNA,对各位点进行均一的扩增。

REPLI-g技术的性能优于基于PCR的全基因组扩增技术

传统方法扩增基因组DNA需要进行耗时的EBV转化细胞系步骤,并用随机或变性的寡聚核苷酸引物进行全基因组扩增。基于PCR的方法(如:DOP-PCR和PEP)会产生非特异性的扩增产物,不能完全覆盖所有位点。有时,产生小于1 kb的DNA,在许多下游应用中都无法使用。由于使用低保真酶Taq DNA聚合酶,产物DNA突变率较高,扩增易出错,会导致碱基对突变。REPLI-g技术没有这些缺陷,并能够高度均一的扩增全基因组,位点偏差小、错配率小(参见"Highly representative amplification using REPLI-g technology" and "Consistent and accurate whole genome amplification")。

原理

独特的REPLI-g技术使用创新的高保真酶Phi29聚合酶,利用多重置换扩增(MDA)技术扩增复杂的基因组DNA,并结合温和的碱变性,均一的扩增基因组位点。REPLI-g Mini Kit的常规产量为10 µg,如需更多产量,可使用REPLI-g Midi Kit;因为这两个试剂盒的实验方案相同,反应体积也相同。反应体系构建十分简便,仅需约15分钟的手动操作时间,因此REPLI-g技术使用简便、可靠,适用于对少量或珍贵的样本进行完全、均一的扩增。

扩增原理

REPLI-g利用等温基因组扩增,即多重置换扩增(MDA)技术:随机引物与变性DNA结合,在等温环境中,在Phi29聚合酶的作用下,进行置换合成反应。每个置换的单链作为模板,与引物结合,扩增生成高产量的DNA(参见"Schematic representation of REPLI-g amplification")。Phi 29聚合酶为噬菌体衍生酶,具有3'→5'外切酶活性,准确性为Taq DNA聚合酶的1000倍。Phi29聚合酶与独特的REPLI-g缓冲液体系相配合,能够轻松的打开DNA的二级结构,如发卡结构,所以可确保在扩增过程中,聚合酶正常发挥作用。因此该技术生成的DNA片段长度可达100 kb,没有序列偏差(参见"Unbiased amplification with Phi29 polymerase")。

DNA的碱变性

在酶扩增前,必须使基因组DNA变性,这通常是通过高温孵育、或在强碱性条件下进行的。REPLI-g Mini Kit采用温和的碱性环境孵育,使DNA变性,而片段化程度低,突变少。由此扩增获得的DNA十分完整,扩增的片段长,覆盖所有基因组位点和序列。使用REPLI-g Mini Kit能够获得可靠的结果,确保在下游应用中不出现假阳性或假阴性结果。采用热变性的WGA技术会损伤模板DNA,导致扩增结果不准确(参见"Effect of heat and alkaline denaturation on loci representation")。

操作手順

便利的单管操作

REPLI-g Mini Kit通过简便、高效的方法从纯化的少量基因组DNA样本或直接从全血、干血卡、白膜层、组织、培养的细胞中进行准确的全基因组扩增(参见"REPLI-g Mini and Midi procedure")。加入裂解缓冲液使样本DNA裂解并变性,之后进行短暂孵育(参见"REPLI-g Mini and Midi procedure")。中和后加入预混液(包括REPLI-g Mini DNA Polymerase),在30°C过夜进行等温扩增。REPLI-g扩增获得的DNA刻在–20°C长期储存(参见"Consistent long-term stability")。

选择适合您实验需求的REPLI-g Kit(参见下表)。

表1. 种类丰富的REPLI-g Kits

REPLI-g Mini REPLI-g UltraFast Mini REPLI-g Midi REPLI-g Screening REPLI-g FFPE REPLI-g Mitochondrial DNA
起始样本 纯化后gDNA、血液、细胞 纯化后gDNA、血液、细胞 FFPE组织、FFPE组织中纯化得到的gDNA 纯化后gDNA
起始样本量 >10 ng gDNA, 0.5 µl blood or cells (>600 cells/µl) >10 ng gDNA, 0.5 µl blood or cells (>600 cells/µl) Section (1 cm diameter, 10-40 µm thick); >100 ng gDNA >1 ng纯化后gDNA
产量(µg/反应) 10 7–10 40 8 标准产量:≤10,高产量≤40 3–5
反应时间(小时) 10–16 1.5 8–16 12–16 标准产量:4,高产量:10 8
手动操作时间(分钟) 15 15 15 15 40 15
规格 反应管 反应管 反应管 孔板 反应管 反应管
アプリケーション

REPLI-g扩增得到的DNA可用于多种下游应用,包括:

  • 使用TagMan引物/探针对的SNP基因分型
  • 基于定量PCR或PCR的突变检测
  • 二代测序
  • STR/微卫星分析
  • Sanger测序
  • RFLP和Southern印迹分析
  • 芯片技术,如比较基因组杂交
Feature
Specifications
Amplification Whole genomic DNA
Applications Genotyping, hybridization, RFLP
Denaturation step Alkaline
Maximum input volume >10 ng DNA, 0.1– 0.5 µl whole blood, >600 cells/µl
Minimal pipetting volume needed 0.5 µl
Quality assessment No
Reaction time 8–16 hours (overnight)
Reaction volume 50 µl
Samples per run (throughput) Mid
Starting amount of DNA >10 ng purified genomic DNA
Starting material Genomic DNA, blood, cells, tissue
Technology Multiple Displacement Amplification (MDA)
Yield 10–40 µg

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パンフレット
1
Second edition — innovative tools
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FAQ
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キットハンドブック
1
For whole genome amplification from purified genomic DNA, blood, and cells
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クイックスタートプロトコール
1
画像
Consistent DNA Yields Using any Sample Type.
どのようなタイプのサンプルでも一定したDNA収量

ゲノムDNA、ヘパリンおよびEDTA保存全血を含む様々なスタートサンプルをREPLI-g MidiおよびMini Kitで増幅した。40 µg (Midi Kit)および8~10 µg(Mini Kit)の典型的な収量が得られた。

Effect of Heat and Alkaline Denaturation on Loci Representation.
熱およびアルカリによる変性の遺伝子座への影響
加熱(95℃)あるいはスタンダードのREPLI-g Kitアルカリ溶解プロトコールによりゲノムDNAサンプル(10 ng)を変性した。REPLI-g DNA Polymeraseによる増幅後、2種類の遺伝子座のCT 値をサンプル間で比較した。REPLI-g Kitアルカリ溶解プロトコールを用いて増幅した遺伝子座のCT 値は低く、遺伝子座の増幅が正確に行なわれたことを示し、これらの遺伝子座で配列情報のロスがないことを意味する。
Consistent long-term stability
長期安定性
REPLI-gで増幅したDNAサンプルを4種類のフォーマットにて–20℃で表記した時間だけ保存し、リアルタイムPCRを行なった。2種類の遺伝子座、 [A] 遺伝子座Aおよび [B] 遺伝子座 B、に関してサンプルごとにアッセイを行なった。gDNA:REPLI-gで増幅していないゲノムDNA。保存のフォーマット:50 µlのREPLI-g反応液:1) 追加操作なし("50 µl REPLI-g"); 2) 5 µlを溶液から採取("5 µl REPLI-g"); 3) QIAamp Mini Kitで精製("50 µl QIAamp purified REPLI-g");および 4) 50 ng/µlに希釈(50 µl diluted REPLI-g")。
Comparable NGS results obtained using gDNA or REPLI-g amplified DNA
精製gDNAあるいはREPLI-g増幅DNAで同等のNGS(次世代シークエンシング)結果
Bacillus subtilis ゲノムの全ゲノムシークエンシングを行なった。分析については、2 μgのゲノムDNAあるいはREPLI-g Midi Kitを使用して105 個の細胞から増幅したDNAを300 bpのフラグメントに切断した。ライブラリー調製のためにそれぞれ1 μgを使用した。 Illumina MiSeq装置を用いてシークエンシングを行なった。[A] gDNA およびREPLI-g増幅DNA両方で同等の塩基配列解析率が観察された。[B] ゲノム遺伝子座配列のアライメント比較では、gDNAに比べてREPLI-g増幅DNAでかなり高い比率の整合があることを示し、WGA(whole genome amplification)後でのジャンクDNAのレベルが最少であることを意味する。非増幅DNAおよびREPLI-g増幅DNAは同程度のエラー率(ミスマッチ、高品質エラー、indels、キメラ)が観察された。
(アライメントの比較はSMALT [Welcome Trust Sanger Institute]を用いて行なった)。
REPLI-g Mini and Midi procedure
REPLI-g MiniおよびMidi 操作

REPLI-g Mini Kitを用いたゲノムDNAの増幅は3つの基本的な操作ステップが必要である。テンプレートDNAの断片化および損傷を避けるため、まずサンプル(精製したゲノムDNA 10 ng、全血0.5 µl、組織培養細胞300個)のマイルドなアルカリ変性を行なう。次にサンプルを中和し、REPLI-g master mix を添加して30℃でインキュベートする。

Accurate Genotyping.
正確なジェノタイピング

REPLI-gテクノロジーを用いて20種類のDNAサンプルを増幅した後、DNA精製せずに3種類のSTR遺伝子座(CSF1PO、TPOX、THOI)を用いたジェノタイピング解析を行なった。結果を非増幅ゲノムDNAについて得られたものと比較した。DNAをポリアクリルアミドゲル電気泳動により分離し、銀染色により可視化した。2本のバンドをもつレーンは特定のSTR遺伝子座のヘテロ接合を表す一方、1本のバンドをもつレーンはホモ接合体を表している。

Schematic representation of REPLI-g amplification
REPLI-g増幅の模式図

Phi 29 ポリメラーゼがDNAテンプレート上を移動し相補鎖を置換する。置換したDNA鎖が複製のテンプレートになり長鎖DNAが高い収量で複製される。

Unbiased amplification with Phi29 polymerase
Phi29ポリメラーゼでバイアスのない増幅
[A] DNAの二次構造によってはTaqポリメラーゼが合成を中止、テンプレートからスリップ、あるいは解離する。この結果、不正確なDNA増幅、不完全な遺伝子座の配列解析、短いサイズのフラグメントが生じる。[B] REPLI-g KitはPhi29ポリメラーゼを使用し、全ゲノムの正確で均一な増幅を実現する二次構造に置き換わる。
Highly representative amplification using REPLI-g technology
均一かつ正確な増幅
[A] REPLI-g テクノロジー、 [B] DOP-PCR、 [C] PEPにより増幅したDNAを用いて8つの遺伝子座の相対量をリアルタイム定量PCRにより測定した。増幅していない1 μgのコントロールDNAとの比較から遺伝子座の量を換算した(Dean, F.B. et al.(2002).Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.99, 5261.© 2002 National Academy of Sciences, USA.)。
Consistent and accurate whole genome amplification
均一かつ正確な全ゲノム増幅

REPLI-gテクノロジーで増幅した44個のサンプルを用いて、47種類のヒト遺伝子座(常染色体ごとに2遺伝子座、X染色体上の2遺伝子座、Y染色体上の1遺伝子座)に関してリアルタイムPCRを行なった。各サンプルは約10,000倍に増幅されたが、遺伝子座間の増幅の偏りは最大でもわずか6倍であった。

Uniform DNA Yield from Various Amounts of Template.
様々な量のテンプレートから均一なDNA収量
様々な量のヒトゲノムDNAを標準的なREPLI-g Midi Kit 反応で増幅し、記載時点で溶液の一部を採取した。 スタートサンプルの量とは無関係に、 50 µlの反応液から約40 µgの増幅DNAが得られた。
Reliable SNP genotyping
信頼できるSNPジェノタイピング

REPLI-gテクノロジーで増幅したDNAは精製操作を行なわず、ランダムに選んだ2つの遺伝子座(WIAF-1004およびWIAF-622)のSNPジェノタイピング(TaqMan 解析を使用)に用いた。各アレルが非常に収斂性よくクラスター化するので、ホモおよびヘテロ接合体のジェノタイピングの正確な結果を得ることができる。