Evolución de las dPCR
Las preguntas que se plantean en las complejas tareas de investigación de la actualidad requieren un nivel de detalle de información superior al que proporcionan las tecnologías PCR convencionales. Las PCR digitales de tercera generación se acercan en gran medida a dicho nivel de detalle y representan una técnica mucho más práctica y sencilla de enfrentarse a estas cuestiones.
El concepto de la técnica de la PCR digital surgió en 1992, cuando Skyes et al. lo definieron como “PCR de dilución limitante”. Este método genérico utilizaba el análisis convencional y las estadísticas de Poisson para cuantificar el número absoluto de moléculas de ácido nucleico presentes en cada muestra. Posteriormente, llegó la labor revolucionaria de Vogelstein y Kinzler en 1999, quienes desarrollaron un método en el que la muestra se diluía y se distribuía en reacciones individuales, denominadas “particiones”, y se detectaban y analizaban productos individuales con señales fluorescentes tras la amplificación. Ellos fueron quienes acuñaron el término “PCR digital” tal y como lo conocemos en la actualidad.
A lo largo de los años, estos métodos se han innovado y comercializado hasta alcanzar un uso generalizado. Se pueden realizar PCR digitales en discos y chips de microfluidos, micromatrices, microgotículas, microcristales basados en emulsiones de agua y aceite, y, desde hace poco, en placas similares a las de las qPCR.
¿Sigue buscando respuestas sobre qué es una PCR digital? Consulte nuestra guía de referencia para obtener más información sobre los fundamentos, las ventajas, las limitaciones y las aplicaciones de la PCR digital.
Descubra lo que la PCR digital puede hacer por usted
La PCR digital permite la cuantificación absoluta de ácidos nucleicos sin necesidad de referencias o curvas estándar. El método, que divide la muestra en miles de reacciones individuales, presenta una alta tolerancia a los inhibidores, una precisión superior, una mayor sensibilidad y una elevada reproducibilidad. Debido a estas características, cada vez más investigadores están empleando las PCR digitales en sus análisis de variación del número de copias, detección de mutaciones raras, detección de carga vírica, análisis de expresión génica, cuantificación de genotecas de secuenciación de última generación y otras aplicaciones.
Cuantificación absoluta en 4 pasos
Divida y vencerá
Aunque la muestra se prepara de manera similar a las muestras para qPCR, la división de la muestra, en la que se divide en miles de reacciones individuales antes de la amplificación, es un paso exclusivo de las PCR digitales. Mediante la distribución aleatoria de las moléculas en particiones, a diferencia de los análisis en bloque de las qPCR, las PCR digitales minimizan el efecto de las moléculas diana que compiten entre sí y mejoran la precisión y la sensibilidad en la detección de moléculas poco frecuentes.
Esta opción permite a los investigadores:
- Cuantificar moléculas diana de baja abundancia o en señales de fondo complejas
- Detectar y diferenciar variantes alélicas (SNP)
- Supervisar pequeños cambios en los niveles de moléculas diana que no pueden detectarse mediante qPCR
Las 3 ventajas principales de la estrategia de partición
La ecuación de Poisson da sentido al método de división
Al contrario de lo que ocurre con las real-time qPCR, las PCR digitales no dependen de cada ciclo de amplificación para determinar la cantidad relativa de moléculas diana. Más bien, funcionan mediante las estadísticas de la ecuación de Poisson para determinar la cantidad de moléculas diana absolutas tras la amplificación convencional.
Debido a que la molécula diana está distribuida al azar en las distintas partes disponibles, la distribución según la ecuación de Poisson calcula el número de moléculas medio de cada partición (cero, una o varias) y calcula las copias de la molécula diana por cada partición positiva. El análisis estadístico de Poisson del número de reacciones positivas y negativas da lugar a una cuantificación precisa y absoluta de la secuencia de la diana.
Respuestas breves y preguntas frecuentes sobre la PCR digital
Lista de lectura
- Vogelstein B and Kinzler KW (1999). Digital PCR. Proc Nat Acd Sci USA 96, 9236–9241.
- Baker M (2012). Digital PCR hits its stride. Nat Methods 9, 541–544.
- Pohl G and Shih IeM (2004). Principle and applications of digital PCR. Expert Mol Rev Diagn 4, 41–47.
- Sykes PJ et al. (1992). Quantitation of targets for PCR by use of limiting dilution. BioTechniques 13, 444–449.
- Morley AA (2014). Digital PCR: A brief history. Biomol Detect Quantif. 1(1):1-2.
- Quan PL et al. (2018). dPCR: A Technology Review. Sensors (Basel). 18(4):1271.